Обзор современных подходов к определению сальмонелл в водных экосистемах как элемент обеспечения экологической безопасности
DOI:
https://doi.org/10.5281/zenodo.14543728Ключевые слова:
сальмонеллез, Salmonella, определение возбудителя, безопасность пищевых продуктов, аквакультура, экологическая безопасностьПоддерживающие организации
Аннотация
Современные методы идентификации сальмонелл в объектах окружающей среды и продуктах питания позволяют корректно оценить степень патогенной нагрузки и, соответственно, своевременно видоизменять текущие меры контроля возникновения и распространения сальмонеллеза. В настоящей работе раскрыты основные характеристики бактерий рода Salmonella, приводится обзор современных методов определения сальмонелл в продуктах питания и в водных экосистемах.
Скачивания
Библиографические ссылки
1. Абдюкова Э. А. Исследование распространения в поверхностных водоемах антибиотикоустойчивых штаммов энтеробактерий // Стратегия устойчивого развития регионов России. 2012. No 10. С. 109–111.
2. Алешня В. В., Панасовец О. П., Журавлёв П. В., Артёмова Т. З., Гипп Е. К., Загайнова А. В. Изучение влияния отдельных факторов окружающей среды на жизнеспособность сальмонелл в воде для определения её эпидемического потенциала // Гигиена и санитария. 2015. Т. 94, No 7. С. 40–42.
3. Андросова C. В., Першин Е. Я., Мацуга Т. П., Карбышева С. П., Фридман В. В., Савина Л. Г. Распространение сальмонелл в открытых водоемах // Гигиена и санитария. 1980. No 9. С. 87–87.
4. Андрюков Б. Г., Ляпун И. Н., Бынина М. П., Матосова Е. В. Упрощённые форматы современных биосенсоров: 60 лет использования иммунохроматографических тест-систем в лабораторной диагностике // Клиническая лабораторная диагностика. 2020. Т. 65, No 10. С. 611–618. DOI: 10.18821/0869-2084-2020-65-10-611-618.
5. Гречанинова А., Григорьева Н. С., Кича Е. В., Черепанова Н. В., Кафтырева Л. А. Мониторинг сальмонелл, выделенных в открытых водоемах Санкт-Петербурга в 2010–2015 гг. // Инфекция и иммунитет. 2016. Т. 6, No 3. С. 19.
6. Григорьева Н. С., Крошко О. Н., Кича Е. В., Черепанова Н. В. Мониторинг сальмонелл, циркулирующих в открытых водоемах Санкт-Петербурга // Проблемы медицинской микологии. Учредители: Северо-Западный государственный медицинский университет им. И. И Мечникова. 2022. Т. 24, No 2. С. 64.
7. Дерябина О. И., Морцев В. В., Сидорова В. Ф. Санитарно-бактериологический контроль за циркуляцией сальмонелл в объектах внешней среды в Нижегородской области // Инфекция и иммунитет. 2017. No S. С. 921–921.
8. Журавлев П. В., Алешня В. В., Головина С. В., Панасовец О. П., Недачин Е. А., Галаева Ю. Г., Артемова Т. З., Гипп Е. К., Загайнова А. В., Буторина Н. Н. Мониторинг бактериального загрязнения водоемов Ростовской области // Гигиена и санитария. 2010. No 5. С. 35–38.
9. Яковлева О. Н., Талаева Ю. Г. Изучение распространения и выживаемости антибиотикорезистентных сальмонелл в воде // Гигиена и санитария. 1983. No 7. С. 77–79.
10. Andrews J. R., Ryan E. T. Diagnostics for invasive Salmonella infections: Current challenges and future directions // Vaccine. 2015. Vol. 33, No Suppl 3(0 3). P. C8–C15. DOI: 10.1016/j.vaccine.2015.02.030.
11. Antunes P., Campos J., Mourão J., Pereira J., Novais C., Peixe L. Inflow water is a major source of trout farming contamination with Salmonella and multidrug resistant bacteria // Sci. Total Environ. 2018. Vol. 642. P. 1163–1171. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2018.06.143.
12. Arunkumar M., LewisOscar F., Thajuddin N., Pugazhendhi A., Nithya C. In vitro and in vivo biofilm forming Vibrio spp: A significant threat in aquaculture // Process Biochem. 2020. Vol. 94. P. 213–223. DOI: 10.1016/j.procbio.2020.04.029.
13. Ayuti S. R., Khairullah A. R., Al-Arif M. A., Lamid M., Warsito S. H., Moses I. B., Hermawan I. P., Silaen O. S. M., Lokapirnasari W. P., Aryaloka S., Ferasyi T. R., Hasib A., Delima M. Tackling salmonellosis: A comprehensive exploration of risks factors, impacts, and solutions // Open veterinary journal. 2024. Vol. 14, No 6. P. 1313–1329. DOI: 10.5455/OVJ.2024.v14.i6.1.
14. Besser J. M. Salmonella epidemiology: A whirlwind of change // Food Microbiol. 2018. Vol. 71. P. 55–9. DOI: 10.1128/10.1016/j.fm.2017.08.018.
15. Cardim Falcao R., Edwards M. R., Hurst M., Fraser E., Otterstatter M. A Review on Microbiological Source Attribution Methods of Human Salmonellosis: From Subtyping to WholeGenome Sequencing // Foodborne Pathog Dis. 2024. Vol. 21, No 3. P. 137–146. DOI: 10.1089/fpd.2023.0075.
16. Carstens C. K., Salazar J. K., Darkoh C. Multistate outbreaks of foodborne illness in the United States associated with fresh produce from 2010 to 2017 // Front Microbiol. 2019. Vol. 10. P. 2667. DOI: 10.3389/fmicb.2019.02667.
17. Casanova L. M., Sobsey M. D. Antibiotic-Resistant Enteric Bacteria in Environmental Waters // Water. 2016. Vol. 8. P. 561. DOI: 10.3390/w8120561.
18. Cascarano M. C., Stavrakidis-Zachou O., Mladineo I., Thompson K. D., Papandroulakis N., Katharios P. Mediterranean Aquaculture in a Changing Climate: Temperature Effects on Pathogens and Diseases of Three Farmed Fish Species // Pathogens. 2021. Vol. 10. P. 1205. DOI: 10.3390/pathogens10091205.
19. Chattaway M. A., Langridge G. C., Wain J. Salmonella nomenclature in the genomic era: A time for change // Sci. Rep. 2021. Vol. 11. P. 7494. DOI: 10.1038/s41598-021-86243-w.
20. Chen J., Liu X., Chen J., Guo Z., Wang Y., Chen G., Chen X., Yan Q., Yang P., Li R., Yang G., Lan Q., Wang J. Development of a rapid test method for Salmonella enterica detection based on fluorescence probe-based recombinase polymerase amplification // Food Anal. Methods. 2019. Vol. 12. P. 1791–1798. DOI: 10.1007/s12161-019-01526-3.
21. Cossu A., Levin R. E. Rapid conventional PCR and real-time-qPCR detection of low numbers of Salmonella enterica from ground beef without enrichment // Food Biotechnol. 2014. Vol. 28. P. 96–105. DOI: 10.1080/08905436.2014.895946.
22. Crim S. M., Iwamoto M., Huang J. Y., Griffin P. M., Gilliss D., Cronquist A. B., Cartter M., Tobin-D'Angelo M., Blythe D., Smith K., Lathrop S., Zansky S., Cieslak P. R., Dunn J., Holt K. G., Lance S., Tauxe R., Henao O. L. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Incidence and trends of infection with pathogens transmitted commonly through food – Foodborne Diseases Active Surveillance Network, 10 US sites, 2006–2013 // MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2014. Vol. 63, No 15. P. 328–32.
23. Dekker J. P., Frank K. M. Salmonella, Shigella, and yersinia // Clinics in laboratory medicine. 2015. Vol. 35, No 2. P. 225–246. DOI: 10.1016/j.cll.2015.02.002.
24. Di Febo T., Schirone M., Visciano P., Portanti O., Armillotta G., Persiani T., Di Giannatale E., Tittarelli M., Luciani M. Development of a capture ELISA for rapid detection of Salmonella enterica in food samples // Food Anal. Methods. 2019. Vol. 12. P. 322–330. DOI: 10.1007/s12161-018-1363-2.
25. Dib A.L., Agabou A., Chahed A., Kurekci C., Moreno E., Espigares M., Espigares E. Isolation, molecular characterization and antimicrobial resistance of enterobacteriaceae isolated from fish and seafood // Food Control. 2018. Vol. 88. P. 54–60. DOI: 10.1016/j.foodcont.2018.01.005.
26. Dietrich J., Hammerl J. A., Johne A., Kappenstein O., Loeffler C., Nöckler K., Rosner B., Spielmeyer A., Szabo I., Richter M. H. Impact of climate change on foodborne infections and intoxications // Journal of Health Monitoring. 2023. Vol. 8, No Suppl 3. P. 78. DOI: 10.25646/11403.
27. dos Santos R. R., Xavier R.G.C., de Oliveira T. F., Leite R. C., Figueiredo H. C. P., Leal C. A. G. Occurrence, genetic diversity, and control of Salmonella enterica in native Brazilian farmed fish // Aquaculture. 2019. Vol. 501. P. 304–312. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2018.11.034.
28. Dougan G., Baker S. Salmonella enterica serovar Typhi and the pathogenesis of typhoid fever // Annual review of microbiology. 2014. Vol. 68. P. 317–336. DOI: 10.1146/annurev-micro091313-103739.
29. Ehuwa O., Jaiswal A. K., Jaiswal S. Salmonella, Food Safety and Food Handling Practices // Foods. 2021. Vol. 10. P. 907. DOI : 10.3390/foods10050907.
30. Eng S. K., Pusparajah P., Ab Mutalib N. S., Ser H. L., Chan K. G., Lee L. H. Salmonella: a review on pathogenesis, epidemiology and antibiotic resistance // Front. Life Sci. 2015. Vol. 8, No 3. P. 284–293. DOI: 10.1080/21553769.2015.1051243.
31. Fernandes D. V. G. S., Castro V. S., Neto A. d. C., Figueiredo E. E. d. S. Salmonella spp. in the fish production chain: A review // Ciência Rural. 2018. Vol. 48. P. e20180141. DOI: 0.1590/0103-8478cr20180141.
32. Ferrari R. G., Panzenhagen P. H. N., Conte-Junior C. A. Phenotypic and Genotypic Eligible Methods for Salmonella Typhimurium Source Tracking // Frontiers in microbiology. 2017. Vol. 8. P. 2587. DOI: 10.3389/fmicb.2017.02587.
33. Gao W., Huang H., Zhu P. Recombinase polymerase amplification combined with lateral flow dipstick for equipment-free detection of Salmonella in shellfish // Bioprocess Biosyst. Eng. 2018. Vol. 41. P. 603–611. DOI: 10.1007/s00449-018-1895-2.
34. Gazal L. E. de S., de Brito K. C. T., Cavalli L. S., Kobayashi R. K. T., Nakazato G., Otutumi L. K., da Cunha A. C., Pires Neto J. A. S., de Brito B. G. Salmonella sp. in fish—What is the importance for health in fish farm? // Pesqui. Agropecuária Gaúcha. 2018. Vol. 24. P. 55–64. DOI: 0.36812/pag.2018241/255-64.
35. Haley B. J., Cole D. J., Lipp E. K. Distribution, diversity, and seasonality of waterborne salmonellae in a rural watershed // Applied and environmental microbiology. 2009. Vol. 75, No 5. P. 1248-1255. DOI: 10.1128/AEM.01648-08.
36. Hønsvall B. K., Robertson L. J. From research lab to standard environmental analysis tool: Will NASBA make the leap? // Water Res. 2017. Vol. 109. P. 389–397. DOI: 10.1016/j.watres.2016.11.052.
37. Howard I., Espigares E., Lardelli P., Martín J. L., Espigares M. Evaluation of microbiological and physicochemical indicators for wastewater treatment // Environmental Toxicology: An International Journal. 2004. Vol. 19, No 3. P. 241–249. DOI: 10.1002/tox.20016.
38. Jajere S. M. A review of Salmonella enterica with particular focus on the pathogenicity and virulence factors, host specificity and antimicrobial resistance including multidrug resistance // Vet. World. 2019. Vol. 12. P. 504–552. DOI: 10.14202/vetworld.2019.504-521.
39. Jones L. A., Worobo R. W., Smart C. D. Plant-pathogenic oomycetes, Escherichia coli strains, and Salmonella spp. frequently found in surface water used for irrigation of fruit and vegetable crops in New York State // Applied and Environmental Microbiology. 2014. Vol. 80, No 16. P. 4814-4820. DOI: 10.1128/AEM.01012-14.
40. Kang J., Kim M.-G. Advancements in DNA-assisted Immunosensors // BioChip J. 2020. Vol. 14. P. 18–31. DOI: 10.1007/s13206-020-4103-9.
41. Keerthirathne T. P., Ross K., Fallowfield H., Whiley H. A review of temperature, pH, and other factors that influence the survival of Salmonella in mayonnaise and other raw egg products // Pathogens. 2016. Vol. 5, No 4. P. 63. DOI: 10.3390/pathogens5040063.
42. Kim S.-O., Kim S.-S. Bacterial pathogen detection by conventional culture-based and recent alternative (polymerase chain reaction, isothermal amplification, enzyme linked immunosorbent assay, bacteriophage amplification, and gold nanoparticle aggregation) methods in food samples: A review // J. Food Saf. 2021. Vol. 41. P. e12870. DOI: 10.1111/jfs.12870.
43. Klase G., Lee S., Liang S., Kim J., Zo Y., G. Lee J. The microbiome and antibiotic resistance in integrated fishfarm water: Implications of environmental public health // Sci. Total Environ. 2019. Vol. 649. P. 1491–1501. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2018.08.288.
44. Kumar P., Kumar R. Enteric fever // Indian J Pediatr. 2017. Vol. 84. P. 227–30. DOI: 10.1007/s12098-016-2246-4.
45. Laughlin M., Bottichio L., Weiss J., Higa J., McDonald E., Sowadsky R., Fejes D., Saupe A., Provo G., Seelman S., Concepción-Acevedo J., Gieraltowski L., Outbreak Investigation Team. Multistate outbreak of Salmonella Poona infections associated with imported cucumbers, 2015–2016 // Epidemiol Infect. 2019. Vol. 147. P. e270. DOI: 10.1017/s0950268819001596.
46. Lee K., Runyon M., Herrman T. J., Phillips R. W., Hsieh J. J. Review of Salmonella detection and identification methods: Aspects of rapid emergency response and food safety // Food Control. 2015. Vol. 47. P. 264–276. DOI: 10.1016/j.foodcont.2014.07.011.
47. Levantesi C., La Mantia R., Masciopinto C., Böckelmann U., Ayuso-Gabella M. N., Salgot M., Tandoi V., Van Houtte E., Wintgens T., Grohmann E. Quantification of pathogenic microorganisms and microbial indicators in three wastewater reclamation and managed aquifer recharge facilities in Europe // Science of the Total Environment. 2010. Vol. 408, No 21. P. 4923–4930. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2010.07.042.
48. Li B., Vellidis G., Liu H., Jay-Russell M., Zhao S., Hu Z., Wright A., Elkins C. A. Diversity and antimicrobial resistance of Salmonella enterica isolates from surface water in southeastern United States // Applied and environmental microbiology. 2014. Vol. 80, No 20. P. 6355–6365. DOI: 10.1128/AEM.02063-14.
49. Li K., Petersen G., Barco L., Hvidtfeldt K., Liu L., Dalsgaard A. Salmonella Weltevreden in integrated and non-integrated tilapia aquaculture systems in Guangdong, China // Food Microbiol. 2017. Vol. 65. P. 19–24. DOI: 10.1016/j.fm.2017.01.014.
50. Lin L., Zheng Q., Lin J., Yuk H.-G., Guo L. Immuno-and nucleic acid-based current technique for Salmonella detection in food // Eur. Food Res. Technol. 2020. Vol. 246. P. 373–395. DOI: 10.1007/s00217-019-03423-9.
51. Liu H., Whitehouse C. A., Li B. Presence and persistence of Salmonella in water: the impact on microbial quality of water and food safety // Frontiers in Public Health. 2018. Vol. 6. P. 159. DOI: 10.3389/fpubh.2018.00159.
52. Liu J., Jasim I., Shen Z., Zhao L., Dweik M., Zhang S., Almasri M. A microfluidic based biosensor for rapid detection of Salmonella in food products // PloS one. 2019. Vol. 14, No 5. P. e0216873. DOI: 10.1371/journal.pone.0216873.
53. Liu N., Zou D., Dong D., Yang Z., Ao D., Liu W., Huang L. Development of a multiplex loop-mediated isothermal amplification method for the simultaneous detection of Salmonella spp. and Vibrio parahaemolyticus // Sci. Rep. 2017. Vol. 7. P. 45601. DOI: 10.1038/srep45601.
54. Lobato I. M., O’Sullivan C. K. Recombinase polymerase amplification: Basics, applications and recent advances // TrAC–Trends Anal. Chem. 2018. Vol. 98. P. 19–35. DOI: 10.1016/j.trac.2017.10.015.
55. Luo Z., Gu G., Ginn A., Giurcanu M. C., Adams P., Vellidis G., van Bruggen A. H., Danyluk M. D., Wright A. C. Distribution and characterization of Salmonella enterica isolates from irrigation ponds in the southeastern United States // Applied and environmental microbiology. 2015. Vol. 81, No 13. P. 4376–4387. DOI: 10.1128/AEM.04086-14.
56. Majowicz S. E., Musto J., Scallan E., Angulo F. J., Kirk M., O'Brien S. J., Jones T. F., Fazil A., Hoekstra R. M., International Collaboration on Enteric Disease 'Burden of Illness'Studies. The global burden of nontyphoidal Salmonella gastroenteritis // Clinical infectious diseases. 2010. Vol. 50, No 6. P. 882-889. DOI: 10.1086/650733.
57. Mak W. C., Beni V., Turner A. P. Lateral-flow technology: From visual to instrumental // TrAC–Trends Anal. Chem. 2016. Vol. 79. P. 297–305. DOI : 10.1016/j.trac.2015.10.017.
58. Martin L. B., Khanam F., Qadri F., Khalil I., Sikorski M. J., Baker S. Vaccine value profile for Salmonella enterica serovar Paratyphi A // Vaccine. 2023. Vol. 41, No Suppl 2. P. S114–S133. DOI: 10.1016/j.vaccine.2023.01.054.
59. Mkangara M. Prevention and control of human Salmonella enterica infections: an implication in food safety // Int. J. Food Sci. 2023. Vol. 2023, No 1. P. 8899596. DOI: 10.1155/2023/8899596.
60. Mughini-Gras L., Kooh P., Fravalo P., Augustin J. C., Guillier L., David J., Thébault A., Carlin F., Leclercq A., Jourdan-Da-Silva N., Pavio N., Villena I., Sanaa M., Watier L. Critical orientation in the jungle of currently available methods and types of data for source attribution of foodborne diseases // Front Microbiol. 2019. Vol. 10. P. 2578. DOI: 10.3389/fmicb.2019.02578.
61. Paniel N., Noguer T. Detection of Salmonella in Food Matrices, from Conventional Methods to Recent Aptamer-Sensing Technologies // Foods. 2019. Vol. 8, No 9. P. 371. DOI: 10.3390/foods8090371.
62. Peng H., Huang Z., Wu W., Liu M., Huang K., Yang Y., Deng H., Xia X., Chen W. Versatile High-Performance Electrochemiluminescence ELISA Platform Based on a Gold Nanocluster Probe // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2019. Vol. 11. P. 24812–24819. DOI: 10.1021/acsami.9b08819.
63. Popa G. L., Papa M. I. Salmonella spp. infection – A continuous threat worldwide // Germs. 2021. Vol. 11, No 1. P. 88–96. DOI: 10.18683/germs.2021.1244.
64. Porto Y. D., Fogaça F. H. D. S., Andrade A. O., da Silva L. K. S., Lima J. P., da Silva J. L., Vieira B. S., Cunha Neto A., Figueiredo E. E. S., Tassinari W. S. Salmonella spp. In Aquaculture: An Exploratory Analysis (Integrative Review) of Microbiological Diagnoses between 2000 and 2020 // Animals : an open access journal from MDPI. 2022. Vol. 13, No 1. P. 27. DOI: 10.3390/ani13010027.
65. Ruan J., Wang W., Zhang T., Zheng T., Zheng J., Yu S., Yu D., Huang Y. Establishment of a duplex real-time qPCR method for detection of Salmonella spp. and Serratia fonticola in fishmeal // AMB Express. 2020. Vol. 10. P. 207. DOI: 10.1186/s13568-020-01144-x.
66. Saingam P., Li B., Yan T. Fecal Indicator Bacteria, Direct Pathogen Detection, and Microbial Community Analysis Provide Different Microbiological Water Quality Assessment of a Tropical Urban Marine Estuary // Water Res. 2020. Vol. 185. P. 116280. DOI: 10.1016/j.watres.2020.116280.
67. Salamin O., Kuuranne T., Saugy M., Leuenberger N. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) as an alternative to PCR: A rapid on-site detection of gene doping // Drug Test. Anal. 2017. Vol. 9. P. 1731–1737. DOI: 10.1002/dta.2324.
68. Scallan E., Hoekstra R. M., Angulo F. J., Tauxe R. V., Widdowson M. A., Roy S. L., Jones J. L., Griffin P. M. Foodborne illness acquired in the United States--major pathogens // Emerging infectious diseases. 2011. Vol. 17, No 1. P. 7–15. DOI: 10.3201/eid1701.p11101.
69. Shaji S., Selvaraj R.K., Shanmugasundaram R. Salmonella infection in poultry: a review on the pathogen and control strategies // Microorganisms. 2023. Vol. 11, No 11. P. 2814. DOI: 10.3390/microorganisms11112814.
70. Silva C., Calva E., Maloy S. One Health and food-borne disease: Salmonella transmission between humans, animals, and plants // Microbiol Spectr. 2014. Vol. 2. P. 1–2. DOI: 10.1128/microbiolspec.oh-0020-2013.
71. Silva G. B. L., Campos F. V., Guimarães M. C. C., Oliveira J. P. Recent developments in lateral flow assays for Salmonella detection in food products: a review // Pathogens (Basel, Switzerland). 2023. Vol. 12, No 12. P. 1441. DOI: 10.3390/pathogens12121441.
72. Silva N. F. D., Magalhães J. M. C. S., Freire C., Delerue-Matos C. Electrochemical biosensors for Salmonella: State of the art and challenges in food safety assessment // Biosens. Bioelectron. 2018. Vol. 99. P. 667–682. DOI: 10.1016/j.bios.2017.08.019.
73. Sue M. J., Yeap S. K., Omar A. R., Tan S. W. Application of PCR-ELISA in Molecular Diagnosis // BioMed Res. Int. 2014. Vol. 2014. P. 653014. DOI: 10.1155/2014/653014.
74. Thames H. T., Theradiyil Sukumaran A. A review of Salmonella and Campylobacter in broiler meat: Emerging challenges and food safety measures // Foods. 2020. Vol. 9, No 6. P. 776. DOI: 10.3390/foods9060776.
75. Tian Y. M., Bu T., Zhang M. Metal-polydopamine framework based lateral flow assay for highly sensitive detection of tetracycline in food samples // Food Chem. 2021. Vol. 339. P. 127854. DOI: 10.1016 /j.foodchem.2020.127854.
76. Wang M, Zhang Y, Tian F, Liu X, Du S, Ren G. Overview of Rapid Detection Methods for Salmonella in Foods: Progress and Challenges // Foods (Basel, Switzerland). 2021. Vol. 10, No 10. P. 2402. DOI: 10.3390/foods10102402.
77. Wéry N., Lhoutellier C., Ducray F., Delgenès J. P., Godon J. J. Behaviour of pathogenic and indicator bacteria during urban wastewater treatment and sludge composting, as revealed by quantitative PCR // Water research. 2008. Vol. 42, No 1–2. P. 53–62. DOI: 10.1016/j.watres.2007.06.048.
78. Wessels K., Rip D., Gouws P. Salmonella in chicken meat: Consumption, outbreaks, characteristics, current control methods and the potential of bacteriophage use // Foods. 2021. Vol. 10, No 8. P. 1742. DOI: 10.3390/foods10081742.
79. Wilkes G., Edge T., Gannon V., Jokinen C., Lyautey E., Medeiros D., Neumann N., Ruecker N., Topp E., Lapen D. R. Seasonal relationships among indicator bacteria, pathogenic bacteria, Cryptosporidium oocysts, Giardia cysts, and hydrological indices for surface waters within an agricultural landscape // Water research. 2009. Vol. 43, No 8. P. 2209–2223. DOI: 10.1016/j.watres.2009.01.033.
80. Wu G. P., Chen S. H., Levin R. E. Application of ethidium bromide monoazide for quantification of viable and dead cells of Salmonella enterica by real-time loop-mediated isothermal amplification // J. Microbiol. Methods. 2015. Vol. 117. P. 41–48. DOI: 10.1016/j.mimet.2015.07.012.
81. Zeng H., Rasschaert G., De Zutter L., Mattheus W., De Reu K. Identification of the source for Salmonella contamination of carcasses in a large pig slaughterhouse // Pathogens. 2021. Vol. 10, No 1. P. 77. DOI: 10.3390/pathogens10010077.
Загрузки
Опубликован
Выпуск
Раздел
Лицензия
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
Статьи журнала «Проблемы экологии и охраны природы техногенного региона» находятся в открытом доступе и распространяются в соответствии с условиями Лицензионного Договора с Донецким Государственным университетом, который бесплатно предоставляет авторам неограниченное распространение и самостоятельное архивирование.
