Оптимизация условий культивирования штамма Irpex lacteus 2434 – перспективного продуцента внеклеточных целлюлаз
DOI:
https://doi.org/10.5281/Ключевые слова:
Irpex lacteus, целлюлазы, эндоглюканаза, целлобиаза, оптимизация, температура культивирования, кислотность питательной средыПоддерживающие организации
Аннотация
Проведен подбор условий культивирования штамма Irpex lacteus 2434 на кукурузном талаше (листьях початков) – активного продуцента целлюлозолитических ферментов – по рН питательной среды и температуре с целью увеличения синтеза эндоглюканаз и целлобиаз. Оптимальной температурой культивирования штамма I. lacteus 2434 на кукурузном талаше является 30 °С. Максимальные значения эндоглюканазной активности культуральной жидкости продуцента отмечены на 5-е сутки культивирования при рН 4,5, целлобиазной – на 10-е сутки при рН 4,0.
Скачивания
Библиографические ссылки
1. Авдеева Л. В., Осадчая М. А., Хархота М. А. Целлюлазная активность бактерий рода Bacillus // Мікробіологія і біотехнологія. 2011. № 2. С. 65–72.
2. Древаль К. Г. Культивування базидіоміцетів – активних продуцентів целлюлозолитичніх ензимів. ІІ. Ендоглюканазна активність культуральних фільтратів базидіоміцетів стосовно Na-карбоксиметилцелюлози // Біотехнологія. 2012. Т. 5, № 2. С. 86–91.
3. Древаль К. Г., Бойко М. І. Культивування базидіоміцетів – активних продуцентів целлюлозолитичніх ензимів. IV. Целобіазна активність культуральних фільтратів базидіоміцетів // Біотехнологія. 2012. Т. 5, № 4. С. 82–87.
4. Методы экспериментальной микологии : справочник / И. А. Дудка, С. П. Вассер, И. А. Элланская и др.: [отв. ред. В. И. Билай]. К. : Наук. думка, 1982. 552 с.
5. Приседський Ю. Г. Статистична обробка результатів біологічних експериментів : навч. посібник. Донецьк : Кассиопея, 1999. 210 с.
6. Рабинович М. А., Черноглазова В. М., Клесов А. А. Классификация целлюлаз, их распространение, множественные формы и механизм действия. М. : ВИНИТИ, 1988. № 11. С. 4–189.
7. Синицын А. П., Гусаков А. В., Черноглазов В. М. Биоконверсия лигноцеллюлозных материалов : уч. пособие. М. : Изд-во МГУ, 1995. 224 с.
8. Синицын А. П., Черноглазов В. М., Гусаков А. В. Методы изучения и свойства целлюлозолитических ферментов // Итоги науки и техники. Сер. Биотехнология. 1993. Т. 25. 152 с.
9. Шубаков А. А., Михайлова Е. А., Мартынов В. В. Биоконверсия целлюлозосодержащего сырья. Ферментативный гидролиз целлюлозы (обзор литературы) // Известия Коми научного центра Уральского отделения РАН. Серия «Экспериментальная биология и экология». 2022. № 4 (56). С. 27–38.
10.Bradford M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248–254.
11.Dutta T., Sahoo R., Sengupta R., Ray S. S., Bhattacharjee A., Ghosh S. Novel cellulases from an extremophilic filamentous fungi Penicillium citrinum: production and characterization // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008. N 35. P. 275–282. DOI : 10.1007/s10295-008-0304-2.
12.Fang H., Xia L. Cellulase production by recombinant Trichoderma reesei and its application in enzymatic hydrolysis of agricultural residues // Fuel. 2015. N 143. P. 211–216. DOI : 10.1016/j.fuel.2014.11.056.
13.Ghose T. K. Measurement of cellulase activity // Pure Appl. Chem. 1987. Vol. 59, N 2. P. 257–268.
14.Inglis G. D., Popp A. P., Selinger L. B, Kawchuk L. M., Gaudet D. A., McAllister T. A. Production of cellulases and xylanases by low-temperature basidiomycetes // Can. J. Microbiol. 2000. N 46 (9). P. 860–865. DOI : 10.1139/w00-057.
15.Nelson N. A photometric adaptation of the Somogyi method for the determination of sugars // J. Biol. Chem. 1944. Vol. 153, N 2. P. 375–379.
16.Nkohla A., Okaiyeto K., Olaniran A., Nwodo U., Mabinya L., Okoh A. Optimization of growth parameters for cellulase and xylanase production by Bacillus species isolated from decaying biomass // Journal of Biotech Research. 2017. N 8. P. 33–47.
17. Singh A., Adsul M., Vaishnav N., Mathur A., Singhania R. R. Improved cellulose production by Penicillium janthinellum mutant // Indian J. Exp. Biol. 2017. N 55. P. 436–440.
18. Trinh D. K., Quyen D. T., Do T. T., Nguyen T. T. H., Nghiem N. M. Optimization of culture conditions and medium components for carboxymethyl cellulase (cmcase) production by a novel basidiomycete strain Peniophora sp. NDVN01 // Iranian Journal of Biotechnology. 2013. N 11 (4). P. 251–259. DOI : 10.5812 / ijb.11039.
19. Yadav P. R., Chauhan P. B., Gahlout M. Isolation, screening and optimization of process parameters for enhanced production of cellulase by solid state fermentation // Int. J. Adv. Res. Biol. Sci. 2016. N 3. P. 21–27.
Загрузки
Опубликован
Выпуск
Раздел
Лицензия
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
Статьи журнала «Проблемы экологии и охраны природы техногенного региона» находятся в открытом доступе и распространяются в соответствии с условиями Лицензионного Договора с Донецким Государственным университетом, который бесплатно предоставляет авторам неограниченное распространение и самостоятельное архивирование.
